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3061
2022-12-25
流式数据分析软件（流式细胞数据分析软件）
本篇文章给大家谈谈流式数据分析软件，以及流式细胞数据分析软件对应的知识点，希望对各位有所帮助，不要忘了收藏本站喔。
今天给各位分享流式数据分析软件的知识，其中也会对流式细胞数据分析软件进行解释，如果能碰巧解决你现在面临的问题，别忘了关注本站，现在开始吧！
对数据进行处理：双击fcs格式数据出现流式散点图（建议首先对空白组细胞先处理），圈门（根据实验目的选择合适的圈门工具）并点击ok确定。
双击圈门部位，根据实验目的以及染料的荧光激发/发射波长，选择流式图合适的横坐标和纵坐标。完成后，关闭处理界面，回到软件主界面。
对其他数据进行批处理，鼠标拖动已处理文件到All samples。
点击布局管理器。并拖动已处理文件到布局管理器内。
输出图片，可以点击保存按钮（命名时需要输入后缀.png），或者在图片右击复制然后黏贴到PPT/Word中。
今天将详细介绍如何用FlowJo来分析BD公司的机器Accuri C6采集的数据。Accuri C6是一款全功能、双激光的小型桌面流式细胞仪，有其独特的优势。但是Accuri C6自带的CFlow软件在分析流式数据方面还存在一些进步的空间，比如：缺乏完善的图片叠加功能，尤其是其直方图叠加的效果有待加强；缺乏细胞周期分析工具、增殖分析工具以及动力学分析工具。FlowJo是目前直接可以和它兼容的流式数据分析专业软件，满足用户的数据分析要求。
实际上，用FlowJo分析Accuri C6的流式数据与用FlowJo分析其他流式细胞仪采集的流式数据是一样的。只不过由于Accuri C6在采集数据的时候不需要设置电压等特点，在分析Accuri C6数据的时候要做一些简单的处理。这篇博文将对这些处理步骤做详细的介绍。
一、在Accuri C6将数据导出为FCS格式
ISAC制定的流式数据的标准格式为FCS格式，Accuri C6的CFlow软件默认的数据保存格式为其特有的C6格式。因此，在用FlowJo分析Accuri C6数据之前，需要将数据转换为FCS格式。可参考下面的操作步骤：
1. 打开CFlow软件，点击File菜单，在下拉菜单中选择Open CFlow File or Template，导入采集到的C6格式的数据
2. 点击File菜单，在下拉菜单中选择Export FCS File或者Export ALL Sample as FCS
二者的区别是：
Export FCS File：将选定的某个 data well (sample) 输出为FCS格式的数据，并保存到用户自建的文件夹里
Export ALL Sample as FCS：将所有的data well (sample) 输出为FCS格式的数据，并保存到“CFlow-FCS Exports”文件夹里，这个文件夹一般在桌面上
图1
二、调节坐标轴的范围
由于Accuri C6在采集数据的时候不需要设置电压，而且C6能够采集到的信号范围位于1-16777216（100-107.22），流式图中的细胞群可能会由于坐标轴的范围过大而被压缩在左下角的位置，如图2所示：
图2
这时我们需要合理调节坐标轴的范围，使细胞群显示于流式图的中间位置，从而能明显地看到细胞分群，便于我们设门。
按照以下步骤操作：
1. 点击坐标轴右边的T按钮（图3），在下拉菜单中选择Change displayed parameter range
图3
2. 打开调节坐标轴范围的对话框（图4），在其中输入合适的范围，Min为坐标轴的最小值，Max为最大值
图4
3. 在修改坐标轴范围的时候，输入数值后，点击Apply按钮查看调整后的效果，如果效果不好，再重新输入数值，直到达到理想效果后（如图5）再点击OK按钮
图5
三、对于已经在Accuri C6上进行过荧光补偿的数据
对于在Accuri C6上进行过荧光补偿的数据，FlowJo会默认对其进行双指数转换，并且双指数转换中Positive decades的默认值为4.5，而Accuri C6的Positive decades值为7.22，因此会导致在流式图上会显示出细胞群的压缩（如图6），这种情况下不便于设门而且流式图的效果也不好。
图6
此时我们可以将双指数转换中Positive decades值调为7.22。具体方法是：点击T按钮，在下拉菜单中选择Change transform values，打开Set Transform Values for对话框，将Positive decades值调为7.22（图7）
图7
调整之后，流式图中的细胞群显示正常，位于流式图的中央，便于设门，如图8所示
先在FSC， SSC散点图上划出淋巴细胞gate。然后在此gate基础上选取T细胞标志染色阳性的细胞群（一般是CD3）。在把CD34阳性的细胞根据CD4 和CD8染色情况形式为散点图，得到CD4+/CD8-, CD4-/CD8+, 以及双阳性的比率。如果还有其他细胞标志的染色，再进一步分析。
流式细胞仪数据分析
5.1 数据采集及显示
光信号转换成电压脉冲后，再通过模数转换器转换成为计算机能够储存处理的数字信号。 流式细胞仪的数据以FSC标准格式存储，该标准由“分析细胞学协会”制定。
根据FSC标准，数据存储格式应包括三个文件：样本获取文件，数据设置文件和数据分析结果。 4参数（FSC,SSC,FITC和PE）的单细胞分析会生成8位数据。当单个样品累计收集到10000个细胞时，FCS数据文件为80kB.
数据采集存储完毕后，细胞亚群可以几种不同格式显示。单参数如FSC或FITC（FL1）可使用直方图，横轴表示荧光通道。纵轴表示在该通道内收集到的细胞数量（如图5-1）。处在同一通道的每一细胞均符合该通道的信号值，而且具有相同的信号密度。通道右侧信号的荧光强度明显高于左侧，越靠右侧荧光亮度越强。 图5-1 流式数据分析图
双参数可在二维散点图中同时显示，X轴显示通道1（FL1），Y轴显示通道2（FL2）。3维图通过X,Y,Z三个轴分别显示每个通道的细胞量（如图5-1）。
习题：数据采集及显示
1 在直方图中横轴和纵轴分别表示 .
2 二维点图用于显示 参数。
3 在CellQuest软件中3维图中Z轴代表 .
5.2 设门
通过设门的方法可以定义细胞亚群的区域。如：血样本是混合细胞群，如果想单独分析淋巴球细胞，可根据FSC或细胞大小，在FSC,SSC的散点图中设门，其数据结果只反映淋巴细胞亚群的荧光特性。 图5-2 全血样本中淋巴细胞亚群的数据分析图
习题：设门
1 设门的方法通常用于分析样本内的指定细胞。（对 错）
5.3 细胞亚群的数据分析
数据分析包括从点图中的list-mode文件中显示数据，然后统计点图中的细胞分布情况。如前所述，分别有几种形式的点图用于显示数据，而且可通过设门的方法区分指定的细胞亚群。 如图5-3所示，在淋巴细胞亚群周围设门，以单独分析或分选该亚群细胞。
图5-3 选定淋巴细胞亚群设门
门内细胞的数据结果可在随后的图中显示。在下面的实例中，我们将详尽阐述细胞亚群百分含量的不同分析方法。 我们可以通过单参数直方图，二维点图和三维图来分析结果。单参数直方图可定位边界，二维点图可设置象限标志。如果需要，还可以建立数据统计表以输出结果。 直方图可直观单个参数的细胞数量。阴性对照用于决定直方图中单参数的左右边界（见图5-4）。左图中M1为阴性对照峰。右图中M2为CD3 FITC阳性峰。
图5-4 阴性对照峰M1（NORM001）和CD3 FITC阳性峰M2（NORM002） 图5-5的统计结果表明，整个事件共记录了6000个细胞，门内淋巴细胞2891个。其中M1（阴性）细胞619个，M2（CD3阳性）细胞2272个细胞。淋巴细胞亚群CD3阳性百分含量的统计结果为：M2：2272/2891=78.59%.
图5-5 直方图统计结果
二维点图以双参数显示结果，每个点表示一个或多个细胞。图5-6为阴性对照图，用于设定阴性对照边界，全图划分为四个象限，以区分阴性细胞、单阳性细胞以及双阳性细胞。左下象限（LL）为双阴性细胞，左上象限（UL）为Y轴阳性细胞（CD19 PE），左下象限（LR）为X轴阳性细胞（CD3 FITC），右上象限（UR）为双阳性细胞（CD19+/CD3+）。
图5-6 阴性对照组（NORM001）和CD3 FITC/CD19 PE双染样本（NORM002） 如图5-7所示，淋巴细胞亚群双阳性细胞（CD19+/CD3+）的百分含量为：296/2839=10.43%.
图5-7 散点图统计结果 另一个分析方法是划定区域，也就是设门。我们可以用不同形状的绘图工具定义所选区域（如图5-8所示）；然后统计该区域内指定细胞亚群的百分含量。在图5-9中，R4门内为CD4阳性，CD3阴性的淋巴细胞亚群，其结果为：40/2866=1.40%.
图5-8 CD3 FITC/CD4 PE 双染样本分析图 图5-9 CD3 FITC/CD4 PE 双染样本数据统计结果
这种方法在分析不同的供体细胞时存在一个缺陷，因为如果事先定义好细胞亚群的区域或边界，在随后的文件中，下一个样本的细胞亚群位置会发生变化，这就需要操作者重新调整区域或边界位置。 为避免这种情况的发生，我们采用一种称为集群分析（cluster analysis）的新方法。BD公司的MultiSETTM 和AttractorsTM软件就属于集群分析软件。该软件的特点是会随着整个细胞亚群的移动而移动，自动变换区域或边界到相应的细胞亚群位置（见图5-10）。
图5-10 使用Attractors分析软件时二维点图的前后变化对比
5.4 流式细胞仪的其它应用以及数据分析
这些分析方法通常适用于计算离散细胞群的百分含量，对于分析单克隆细胞株分子是否呈阳性并不适用。因为单克隆细胞株是单个细胞群，在大多数情况下，既不是100%阴性，也不是100%阳性，所以我们通过几何均值法和中位法统计细胞荧光密度和阳性率。如果样本的统计结果远远大于阴性对照组，那么我们认为其结果是阳性的，两者间的差异越大，说明细胞的表达越高，阳性率越高。 如图5-11所示，左图为单细胞群的散射光信号，右图为阴性对照组和两种不同抗体染色样本的峰叠加图。每个峰的几何均值分别为2,5和20（从左至右）。
图5-11 单细胞株分析图 除检测阳性率，几何均值法和中位法还用于分子（接合子）定量分析。
QuantiCALCTM软件就是使用中值法计算每个细胞的抗体结合位点数。如图5-12所示，Y轴上的圆圈代表从标准曲线获取的信息，用于计算每个细胞的接合点位数。 图5-12 使用QuantiCALC软件计算每个细胞的抗体结合位点数 我们使用ModFit LTTM软件进行DNA定量分析。因为DNA峰（G0/G1期，S期和G2M期）不是离散的，所以我们对曲线以下的面积进行积分，以得到每个细胞亚群的百分含量结果。
图5-13 细胞周期的DNA直方图
习题：数据分析
1二维点图和一维直方图的作用分别是什么？
2 见图5-4和图5-5,CD3阴性和阳性的百分含量分别是多少。
3 LL象限代表双阳性细胞亚群。（对 错）
4 见图5-6和图5-7,淋巴细胞（CD3+/CD19-）的百分含量是多少。
5 只能使用矩形设定细胞区域范围。（对 错）
6 使用区域设定法分析样本有哪些不足。
7 避免细胞亚群移动的分析方法是什么。
8 在定量分析中我们使用哪些分析方法检测阳性率。
5.5 CellQuest和CellQuest Pro软件使用
CellQuest和CellQuest Pro软件是目前运用最为广泛的流式细胞仪采集及分析软件。它运行于苹果电脑上，优质的矢量图显示使得操作界面特别优美。现最新的微软公司的Vista软件也是仿苹果操作系统界面的，可想而知在使用CellQuest和CellQuest Pro时的强大功能及视觉质感。CellQuest和CellQuest Pro软件主安装在BD FACSCalibur型流式细胞仪上。
1.软件数据流程
在CellQuest和CellQuest Pro软件的数据流分为二个部分：方案和数据包。方案是指用户可以建立采集或分析所需的直方图或散点图、设门并定义门与门、门与图之间的逻辑关系。可以使用方案进行数据采集或分析以往已有的数据。每个采集方案分析样本后会生成数据包，该数据包中包括了样本中每个颗粒在各个检测参数上的数值，格式为FCS2.0或FCS3.0.
数据包必须由方案文件打开，无法单独显示，或者可由第三方软件进行分析，如WinMDI.
2.软件与仪器的连接
流式细胞仪需要加电开启后会向计算机发出信息，所以如要进行实验需要先开启流式细胞仪，然后再开启计算机。
1、\x09先开仪器后开计算机，以确保仪器和计算机之间的正常通讯。
2、\x09在苹果菜单下点击CellQuest和CellQuest Pro软件。
3、\x09从Aquire菜单下选择connet to cytometer.
3.方案与数据之间的关系
CellQuest和CellQuest Pro软件的方案与数据相互独立保存，数据包可以由任一方案文件进行分析，分析后不改变数据包中的任何数据。CellQuest和CellQuest Pro软件中方案内的直方图或散点图有三种状态：Acquire,Analysis和Acquire-Analysis.
当图的属性为Acquire时，此图只限于采集下用，即只当进行检测时它才能显示颗粒；
当图的属性为Analysis时，此图只限于分析已保存的数据包，它不能用于采集数据。
当图的属性为Acquire-Analysis时，此图即可用于采集数据也可用于分析已有数据。
所以方便起见，我们一般将方案中的直方图或散点图全部设为Acquire-Analysis属性。
CellQuest Pro CellQuest
4.方案的建立
A选择实验参数
默认情况下，FACSCalibur流式细胞仪开机后只打开一根激光器，及五个参数供选择使用：FS、SS、FL1、FL2、FL3.当我们要使用第二根激光器及FL4通道时需要勾选FL4的选项，仪器自动打开633nm激光器。
B,建立散点图或直方图，命名坐标
CellQuest Pro软件主要工作界面，软件类似于Office word的工作面，可在A4大小的页面上进行编辑建立各种直方图或散点图。
在CellQuest软件下，需在选择Plot菜单，选择Format来打开图的属性对话框，其中包括了关于该图所有选项。
建立好直方图或散点图后，我们需要对所选的参数进行命名，如不修改软件自动命名为FS、SS、FL1、FL2、FL3和FL4.
在菜单上选择Acquire栏目，选择Parameter Description,可出现关于文件存储和参数命名的对话框。在这个对话框中用P字母来代表每个参数，并在此对每个采集参数进行命名，FL1为CD3FITC,FL2为CD4PE……
C,设门并建立门与图之间的关系
R与G的关系
R是Region的首个字母，Region一般是指一个闭合形的区域，如矩形区、自由区和圆形区。区域与区域之间可以进行逻辑运算，如AND、OR、NOT等关系。当区域进行运算时软件引进了算术公式的管理概念：
Gate实际了个代数式，简称G,其运算式默认如下：
G1 = R1,或G2=R2
当我们要进行逻辑运算时，可变更为G1=R1 AND R2.此时G1就成了一个算术结果了。
G1=R1 AND R2
G2=R1 NOT R2
G3=R1 OR R2
Region List管理门，可以重命名或删除门。Gate List是对门进行逻辑运算和标识颜色的工具。
建立门与图之间的关系
打开要编辑的直方图或散点图的属性对话框，选择Gate选项，选择门即可。
D,显示统计参数
5.仪器的操作
当计算机与流式细胞仪联机后便会出现以下采集控制框：
在有关仪器操作所有控制选项框都在Cytometer下拉菜单下，同时按住“苹果”键及1、2、3、4便可调取所有控制框：
6.文件的保存及调用
实验或分析过程中所建的方案可以保存下来，通File下拉菜单可以保存这些方案文件：
如要打开这些分析方案只需双建方案图标即可；方案可以分析以往的数据包（前提是方案中的直方图或散点图都已定义成Acquire-Analysis属性），有两种方案打开以往的数据：
方法一：选择直方图或散点图，打开该图的属性框（Plot-》Format），见下图：
在以上红色框标注的地方选择要分析的数据包。
方法二：选中方案中所有的直方图或散点图，打开Plots菜单，选择Chang Data File,打开要分析的数据包。 关于流式数据分析软件和流式细胞数据分析软件的介绍到此就结束了，不知道你从中找到你需要的信息了吗 ？如果你还想了解更多这方面的信息，记得收藏关注本站。 流式数据分析软件的介绍就聊到这里吧，感谢你花时间阅读本站内容，更多关于流式细胞数据分析软件、流式数据分析软件的信息别忘了在本站进行查找喔。
本文目录一览：
- 1、流式分析软件flowjovx怎么安装
- 2、如何用FlowJo分析Accuri C6数据
- 3、怎么用modifit分析流式数据
- 4、如何分析流式细胞仪检测t淋巴细胞亚群结果
- 5、bd流式细胞仪c6 fitc/pe/apc哪个通道
流式分析软件flowjovx怎么安装
打开软件flowjo 7.6.1，鼠标直接拖动数据所在文件夹到软件中，则数据导入。对数据进行处理：双击fcs格式数据出现流式散点图（建议首先对空白组细胞先处理），圈门（根据实验目的选择合适的圈门工具）并点击ok确定。
双击圈门部位，根据实验目的以及染料的荧光激发/发射波长，选择流式图合适的横坐标和纵坐标。完成后，关闭处理界面，回到软件主界面。
对其他数据进行批处理，鼠标拖动已处理文件到All samples。
点击布局管理器。并拖动已处理文件到布局管理器内。
输出图片，可以点击保存按钮（命名时需要输入后缀.png），或者在图片右击复制然后黏贴到PPT/Word中。
如何用FlowJo分析Accuri C6数据
目前市场有很多流式仪器，包括几家大的公司如BD,贝克曼等。FlowJo做为一款优秀的流式数据分析软件，可以兼容几乎所有流式仪器采集的数据，可以弥补其它机器自带软件的分析功能不足的缺憾，这也是FlowJo备受欢迎及推崇的原因。今天将详细介绍如何用FlowJo来分析BD公司的机器Accuri C6采集的数据。Accuri C6是一款全功能、双激光的小型桌面流式细胞仪，有其独特的优势。但是Accuri C6自带的CFlow软件在分析流式数据方面还存在一些进步的空间，比如：缺乏完善的图片叠加功能，尤其是其直方图叠加的效果有待加强；缺乏细胞周期分析工具、增殖分析工具以及动力学分析工具。FlowJo是目前直接可以和它兼容的流式数据分析专业软件，满足用户的数据分析要求。
实际上，用FlowJo分析Accuri C6的流式数据与用FlowJo分析其他流式细胞仪采集的流式数据是一样的。只不过由于Accuri C6在采集数据的时候不需要设置电压等特点，在分析Accuri C6数据的时候要做一些简单的处理。这篇博文将对这些处理步骤做详细的介绍。
一、在Accuri C6将数据导出为FCS格式
ISAC制定的流式数据的标准格式为FCS格式，Accuri C6的CFlow软件默认的数据保存格式为其特有的C6格式。因此，在用FlowJo分析Accuri C6数据之前，需要将数据转换为FCS格式。可参考下面的操作步骤：
1. 打开CFlow软件，点击File菜单，在下拉菜单中选择Open CFlow File or Template，导入采集到的C6格式的数据
2. 点击File菜单，在下拉菜单中选择Export FCS File或者Export ALL Sample as FCS
二者的区别是：
Export FCS File：将选定的某个 data well (sample) 输出为FCS格式的数据，并保存到用户自建的文件夹里
Export ALL Sample as FCS：将所有的data well (sample) 输出为FCS格式的数据，并保存到“CFlow-FCS Exports”文件夹里，这个文件夹一般在桌面上
图1
二、调节坐标轴的范围
由于Accuri C6在采集数据的时候不需要设置电压，而且C6能够采集到的信号范围位于1-16777216（100-107.22），流式图中的细胞群可能会由于坐标轴的范围过大而被压缩在左下角的位置，如图2所示：
图2
这时我们需要合理调节坐标轴的范围，使细胞群显示于流式图的中间位置，从而能明显地看到细胞分群，便于我们设门。
按照以下步骤操作：
1. 点击坐标轴右边的T按钮（图3），在下拉菜单中选择Change displayed parameter range
图3
2. 打开调节坐标轴范围的对话框（图4），在其中输入合适的范围，Min为坐标轴的最小值，Max为最大值
图4
3. 在修改坐标轴范围的时候，输入数值后，点击Apply按钮查看调整后的效果，如果效果不好，再重新输入数值，直到达到理想效果后（如图5）再点击OK按钮
图5
三、对于已经在Accuri C6上进行过荧光补偿的数据
对于在Accuri C6上进行过荧光补偿的数据，FlowJo会默认对其进行双指数转换，并且双指数转换中Positive decades的默认值为4.5，而Accuri C6的Positive decades值为7.22，因此会导致在流式图上会显示出细胞群的压缩（如图6），这种情况下不便于设门而且流式图的效果也不好。
图6
此时我们可以将双指数转换中Positive decades值调为7.22。具体方法是：点击T按钮，在下拉菜单中选择Change transform values，打开Set Transform Values for对话框，将Positive decades值调为7.22（图7）
图7
调整之后，流式图中的细胞群显示正常，位于流式图的中央，便于设门，如图8所示
怎么用modifit分析流式数据
Modfit分析细胞凋亡操作指南： 1、双击Modfit图标，打开Modfit软件（无需安装），打开界面如下： 、 2、 不用理会弹出的信息，点击OK继续，会出现下述界面，每个均点击OK即可：如何分析流式细胞仪检测t淋巴细胞亚群结果
最常见的是分析CD4， CD8亚群。先在FSC， SSC散点图上划出淋巴细胞gate。然后在此gate基础上选取T细胞标志染色阳性的细胞群（一般是CD3）。在把CD34阳性的细胞根据CD4 和CD8染色情况形式为散点图，得到CD4+/CD8-, CD4-/CD8+, 以及双阳性的比率。如果还有其他细胞标志的染色，再进一步分析。
bd流式细胞仪c6 fitc/pe/apc哪个通道
很简单的啊。流式细胞仪数据分析
5.1 数据采集及显示
光信号转换成电压脉冲后，再通过模数转换器转换成为计算机能够储存处理的数字信号。 流式细胞仪的数据以FSC标准格式存储，该标准由“分析细胞学协会”制定。
根据FSC标准，数据存储格式应包括三个文件：样本获取文件，数据设置文件和数据分析结果。 4参数（FSC,SSC,FITC和PE）的单细胞分析会生成8位数据。当单个样品累计收集到10000个细胞时，FCS数据文件为80kB.
数据采集存储完毕后，细胞亚群可以几种不同格式显示。单参数如FSC或FITC（FL1）可使用直方图，横轴表示荧光通道。纵轴表示在该通道内收集到的细胞数量（如图5-1）。处在同一通道的每一细胞均符合该通道的信号值，而且具有相同的信号密度。通道右侧信号的荧光强度明显高于左侧，越靠右侧荧光亮度越强。 图5-1 流式数据分析图
双参数可在二维散点图中同时显示，X轴显示通道1（FL1），Y轴显示通道2（FL2）。3维图通过X,Y,Z三个轴分别显示每个通道的细胞量（如图5-1）。
习题：数据采集及显示
1 在直方图中横轴和纵轴分别表示 .
2 二维点图用于显示 参数。
3 在CellQuest软件中3维图中Z轴代表 .
5.2 设门
通过设门的方法可以定义细胞亚群的区域。如：血样本是混合细胞群，如果想单独分析淋巴球细胞，可根据FSC或细胞大小，在FSC,SSC的散点图中设门，其数据结果只反映淋巴细胞亚群的荧光特性。 图5-2 全血样本中淋巴细胞亚群的数据分析图
习题：设门
1 设门的方法通常用于分析样本内的指定细胞。（对 错）
5.3 细胞亚群的数据分析
数据分析包括从点图中的list-mode文件中显示数据，然后统计点图中的细胞分布情况。如前所述，分别有几种形式的点图用于显示数据，而且可通过设门的方法区分指定的细胞亚群。 如图5-3所示，在淋巴细胞亚群周围设门，以单独分析或分选该亚群细胞。
图5-3 选定淋巴细胞亚群设门
门内细胞的数据结果可在随后的图中显示。在下面的实例中，我们将详尽阐述细胞亚群百分含量的不同分析方法。 我们可以通过单参数直方图，二维点图和三维图来分析结果。单参数直方图可定位边界，二维点图可设置象限标志。如果需要，还可以建立数据统计表以输出结果。 直方图可直观单个参数的细胞数量。阴性对照用于决定直方图中单参数的左右边界（见图5-4）。左图中M1为阴性对照峰。右图中M2为CD3 FITC阳性峰。
图5-4 阴性对照峰M1（NORM001）和CD3 FITC阳性峰M2（NORM002） 图5-5的统计结果表明，整个事件共记录了6000个细胞，门内淋巴细胞2891个。其中M1（阴性）细胞619个，M2（CD3阳性）细胞2272个细胞。淋巴细胞亚群CD3阳性百分含量的统计结果为：M2：2272/2891=78.59%.
图5-5 直方图统计结果
二维点图以双参数显示结果，每个点表示一个或多个细胞。图5-6为阴性对照图，用于设定阴性对照边界，全图划分为四个象限，以区分阴性细胞、单阳性细胞以及双阳性细胞。左下象限（LL）为双阴性细胞，左上象限（UL）为Y轴阳性细胞（CD19 PE），左下象限（LR）为X轴阳性细胞（CD3 FITC），右上象限（UR）为双阳性细胞（CD19+/CD3+）。
图5-6 阴性对照组（NORM001）和CD3 FITC/CD19 PE双染样本（NORM002） 如图5-7所示，淋巴细胞亚群双阳性细胞（CD19+/CD3+）的百分含量为：296/2839=10.43%.
图5-7 散点图统计结果 另一个分析方法是划定区域，也就是设门。我们可以用不同形状的绘图工具定义所选区域（如图5-8所示）；然后统计该区域内指定细胞亚群的百分含量。在图5-9中，R4门内为CD4阳性，CD3阴性的淋巴细胞亚群，其结果为：40/2866=1.40%.
图5-8 CD3 FITC/CD4 PE 双染样本分析图 图5-9 CD3 FITC/CD4 PE 双染样本数据统计结果
这种方法在分析不同的供体细胞时存在一个缺陷，因为如果事先定义好细胞亚群的区域或边界，在随后的文件中，下一个样本的细胞亚群位置会发生变化，这就需要操作者重新调整区域或边界位置。 为避免这种情况的发生，我们采用一种称为集群分析（cluster analysis）的新方法。BD公司的MultiSETTM 和AttractorsTM软件就属于集群分析软件。该软件的特点是会随着整个细胞亚群的移动而移动，自动变换区域或边界到相应的细胞亚群位置（见图5-10）。
图5-10 使用Attractors分析软件时二维点图的前后变化对比
5.4 流式细胞仪的其它应用以及数据分析
这些分析方法通常适用于计算离散细胞群的百分含量，对于分析单克隆细胞株分子是否呈阳性并不适用。因为单克隆细胞株是单个细胞群，在大多数情况下，既不是100%阴性，也不是100%阳性，所以我们通过几何均值法和中位法统计细胞荧光密度和阳性率。如果样本的统计结果远远大于阴性对照组，那么我们认为其结果是阳性的，两者间的差异越大，说明细胞的表达越高，阳性率越高。 如图5-11所示，左图为单细胞群的散射光信号，右图为阴性对照组和两种不同抗体染色样本的峰叠加图。每个峰的几何均值分别为2,5和20（从左至右）。
图5-11 单细胞株分析图 除检测阳性率，几何均值法和中位法还用于分子（接合子）定量分析。
QuantiCALCTM软件就是使用中值法计算每个细胞的抗体结合位点数。如图5-12所示，Y轴上的圆圈代表从标准曲线获取的信息，用于计算每个细胞的接合点位数。 图5-12 使用QuantiCALC软件计算每个细胞的抗体结合位点数 我们使用ModFit LTTM软件进行DNA定量分析。因为DNA峰（G0/G1期，S期和G2M期）不是离散的，所以我们对曲线以下的面积进行积分，以得到每个细胞亚群的百分含量结果。
图5-13 细胞周期的DNA直方图
习题：数据分析
1二维点图和一维直方图的作用分别是什么？
2 见图5-4和图5-5,CD3阴性和阳性的百分含量分别是多少。
3 LL象限代表双阳性细胞亚群。（对 错）
4 见图5-6和图5-7,淋巴细胞（CD3+/CD19-）的百分含量是多少。
5 只能使用矩形设定细胞区域范围。（对 错）
6 使用区域设定法分析样本有哪些不足。
7 避免细胞亚群移动的分析方法是什么。
8 在定量分析中我们使用哪些分析方法检测阳性率。
5.5 CellQuest和CellQuest Pro软件使用
CellQuest和CellQuest Pro软件是目前运用最为广泛的流式细胞仪采集及分析软件。它运行于苹果电脑上，优质的矢量图显示使得操作界面特别优美。现最新的微软公司的Vista软件也是仿苹果操作系统界面的，可想而知在使用CellQuest和CellQuest Pro时的强大功能及视觉质感。CellQuest和CellQuest Pro软件主安装在BD FACSCalibur型流式细胞仪上。
1.软件数据流程
在CellQuest和CellQuest Pro软件的数据流分为二个部分：方案和数据包。方案是指用户可以建立采集或分析所需的直方图或散点图、设门并定义门与门、门与图之间的逻辑关系。可以使用方案进行数据采集或分析以往已有的数据。每个采集方案分析样本后会生成数据包，该数据包中包括了样本中每个颗粒在各个检测参数上的数值，格式为FCS2.0或FCS3.0.
数据包必须由方案文件打开，无法单独显示，或者可由第三方软件进行分析，如WinMDI.
2.软件与仪器的连接
流式细胞仪需要加电开启后会向计算机发出信息，所以如要进行实验需要先开启流式细胞仪，然后再开启计算机。
1、\x09先开仪器后开计算机，以确保仪器和计算机之间的正常通讯。
2、\x09在苹果菜单下点击CellQuest和CellQuest Pro软件。
3、\x09从Aquire菜单下选择connet to cytometer.
3.方案与数据之间的关系
CellQuest和CellQuest Pro软件的方案与数据相互独立保存，数据包可以由任一方案文件进行分析，分析后不改变数据包中的任何数据。CellQuest和CellQuest Pro软件中方案内的直方图或散点图有三种状态：Acquire,Analysis和Acquire-Analysis.
当图的属性为Acquire时，此图只限于采集下用，即只当进行检测时它才能显示颗粒；
当图的属性为Analysis时，此图只限于分析已保存的数据包，它不能用于采集数据。
当图的属性为Acquire-Analysis时，此图即可用于采集数据也可用于分析已有数据。
所以方便起见，我们一般将方案中的直方图或散点图全部设为Acquire-Analysis属性。
CellQuest Pro CellQuest
4.方案的建立
A选择实验参数
默认情况下，FACSCalibur流式细胞仪开机后只打开一根激光器，及五个参数供选择使用：FS、SS、FL1、FL2、FL3.当我们要使用第二根激光器及FL4通道时需要勾选FL4的选项，仪器自动打开633nm激光器。
B,建立散点图或直方图，命名坐标
CellQuest Pro软件主要工作界面，软件类似于Office word的工作面，可在A4大小的页面上进行编辑建立各种直方图或散点图。
在CellQuest软件下，需在选择Plot菜单，选择Format来打开图的属性对话框，其中包括了关于该图所有选项。
建立好直方图或散点图后，我们需要对所选的参数进行命名，如不修改软件自动命名为FS、SS、FL1、FL2、FL3和FL4.
在菜单上选择Acquire栏目，选择Parameter Description,可出现关于文件存储和参数命名的对话框。在这个对话框中用P字母来代表每个参数，并在此对每个采集参数进行命名，FL1为CD3FITC,FL2为CD4PE……
C,设门并建立门与图之间的关系
R与G的关系
R是Region的首个字母，Region一般是指一个闭合形的区域，如矩形区、自由区和圆形区。区域与区域之间可以进行逻辑运算，如AND、OR、NOT等关系。当区域进行运算时软件引进了算术公式的管理概念：
Gate实际了个代数式，简称G,其运算式默认如下：
G1 = R1,或G2=R2
当我们要进行逻辑运算时，可变更为G1=R1 AND R2.此时G1就成了一个算术结果了。
G1=R1 AND R2
G2=R1 NOT R2
G3=R1 OR R2
Region List管理门，可以重命名或删除门。Gate List是对门进行逻辑运算和标识颜色的工具。
建立门与图之间的关系
打开要编辑的直方图或散点图的属性对话框，选择Gate选项，选择门即可。
D,显示统计参数
5.仪器的操作
当计算机与流式细胞仪联机后便会出现以下采集控制框：
在有关仪器操作所有控制选项框都在Cytometer下拉菜单下，同时按住“苹果”键及1、2、3、4便可调取所有控制框：
6.文件的保存及调用
实验或分析过程中所建的方案可以保存下来，通File下拉菜单可以保存这些方案文件：
如要打开这些分析方案只需双建方案图标即可；方案可以分析以往的数据包（前提是方案中的直方图或散点图都已定义成Acquire-Analysis属性），有两种方案打开以往的数据：
方法一：选择直方图或散点图，打开该图的属性框（Plot-》Format），见下图：
在以上红色框标注的地方选择要分析的数据包。
方法二：选中方案中所有的直方图或散点图，打开Plots菜单，选择Chang Data File,打开要分析的数据包。 关于流式数据分析软件和流式细胞数据分析软件的介绍到此就结束了，不知道你从中找到你需要的信息了吗 ？如果你还想了解更多这方面的信息，记得收藏关注本站。 流式数据分析软件的介绍就聊到这里吧，感谢你花时间阅读本站内容，更多关于流式细胞数据分析软件、流式数据分析软件的信息别忘了在本站进行查找喔。
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